Питательные среды бактериологические
Питательные среды бактериологические — это жидкие, полужидкие или плотные субстраты, используемые для выращивания микроорганизмов в лабораторных или производственных условиях.
Назначение
Их применяют для:
- Выделения чистых культур бактерий, грибов и простейших из биогенных или абиогенных объектов.
- Определения культуральных и ферментативных свойств микроорганизмов.
- Изучения устойчивости микробов к химическим, физическим и биологическим факторам.
- Накопления микробной биомассы и продуктов биосинтеза.
- Хранения музейных культур.
Основные требования
Питательная среда должна:
- Содержать в достаточном количестве неорганические соли, воду, источники углерода и азота, а в ряде случаев — ростовые факторы (витамины, аминокислоты).
- Быть достаточно влажной, чтобы процесс простой диффузии питательных веществ проходил без затруднений.
- Быть прозрачной для визуального или микроскопического наблюдения за ростом микробов.
- Быть стерильной, чтобы точно знать, какому микроорганизму принадлежат наблюдаемые свойства.
- Иметь оптимальные для целевой группы микробов концентрацию водородных ионов (pH) и окислительно-восстановительный потенциал.
Классификация по составу
Минеральные и органические среды.
Природные (натуральные): представляют собой природные субстраты — молоко, желчь, кровь, сыворотка, картофель.
Искусственные (полусинтетические): содержат смесь природных органических веществ и продуктов их кислотного или ферментативного распада.
Синтетические: состоят из забуференной солевой основы и растворов точно известных веществ — аминокислот, углеводов, пуринов, пиримидинов, нуклеотидов, нуклеозидов, жирных кислот, витаминов. Конкретный состав зависит от потребностей конкретного вида микроорганизмов.
Основные компоненты
Основой большинства искусственных органических сред являются:
- Мясная вода
- Мясной экстракт
- Кислотный и ферментативный гидролизаты казеина, свернувшейся крови, сои К основе добавляют хлорид натрия, пептон, дрожжевой экстракт, настои печени или мозга, экстракт эритроцитов, сыворотку, кровь, углеводы, аминокислоты и другие компоненты.
Плотные и полужидкие среды готовят из жидких, добавляя уплотнитель, обычно агар, в концентрации 0.5 — 3%.
Классификация по назначению
- Простые (общеупотребительные): например, мясо-пептонный агар (МПА), мясо-пептонный бульон (МПБ), пептонная вода.
- Дифференциально-диагностические: плотные и жидкие pH-индикаторные, восстановительные, деполимеризующие и другие. Позволяют различить микроорганизмы по биохимическим свойствам.
- Специальные (селективные или элективные): среды, на которых растут только или преимущественно определённые виды или группы видов. Подавляют рост сопутствующей микрофлоры.
Приготовление и контроль
Осветление и стерилизация
Прозрачность сред придают фильтрованием через ватно-марлевые, бумажные или тканевые (из миткаля, бальтинга) фильтры. Для осветления также используют:
- Вспененный водный раствор (1:2) куриного белка (1 яйцо на 1 л среды).
- 10 мл свежей сыворотки крови на 1 л среды. После добавления белка среду взбалтывают, кипятят 10 минут, корректируют pH, фильтруют через ватно-марлевый фильтр и стерилизуют.
Установление и корректировка pH
pH сред устанавливают с помощью индикаторов, колориметрическим или электрометрическим способом.
Колориметрический способ основан на изменении цвета растворов индикаторов в зависимости от концентрации водородных ионов. Часто pH определяют с помощью индикаторной шкалы Михаэлиса в компараторе Уолпола. Это колодка с шестью вертикальными каналами (диаметром с бактериологическую пробирку), расположенными в два ряда по три.
- В центральный канал переднего ряда помещают пробирку с 2 мл исследуемой среды, 4 мл дистиллированной воды и 1 мл индикатора (0.3% водный раствор метанитрофенола).
- В боковые каналы переднего ряда ставят пробирки с 2 мл среды и 5 мл дистиллированной воды (без индикатора).
- В крайние каналы заднего ряда вставляют пробирки со стандартными растворами с известным pH, между которыми предполагается значение pH среды.
- В средний канал заднего ряда помещают пробирку с дистиллированной водой (без индикатора). Наблюдение ведут через горизонтальную щель в проходящем свете. Реакция среды соответствует реакции того стандартного раствора, с которым она совпадает по цвету.
Для корректировки pH в крайние каналы ставят пробирки с требуемым стандартным раствором и средой с близким pH. Затем по каплям добавляют раствор щёлочи или кислоты до совпадения окраски со стандартом. Рассчитывают необходимое количество реагента для всего объёма среды, учитывая, что испытанию подвергалось 2 мл. Для более точного определения pH используют потенциометр согласно инструкции.
Контроль качества
Готовые среды подлежат обязательному контролю:
- Биологический контроль: посев на среду типового штамма того вида микроорганизмов, для которого она предназначена.
- Физико-химический контроль: проверка pH, оптической плотности и других свойств.
- Контроль химического состава: проводится методами, указанными в соответствующем стандарте.
См. также: Стерилизация.
